Phénoliques
Les composés phénoliques sont des familles importantes de produits que l’on trouve sous forme de substances naturelles dans les plantes et les sciences de la vie ou sous forme de produits synthétiques tels que les médicaments.
- Résidus d’antibiotiques et de médicaments /
- Phénoliques
Application note - Parabens in cream using AFFINIMIP®SPE Phenolics
Parabens dans les produits cosmétiques
Le nettoyage des échantillons de crème dopée au paraben a été effectué avec AFFINIMIP®SPE Phenolics. Un protocole très simple et efficace permet d’obtenir des rendements de récupération élevés (>90%).
- Résidus d’antibiotiques et de médicaments /
- Phénoliques
Application note - Carnosic acid in meat using AFFINIMIP®SPE Phenolics
Acide carnosique dans la viande
Le nettoyage des échantillons de viande dopés à l’acide carnosique a été effectué avec AFFINIMIP®SPE Phenolics. Plusieurs procédés d’extraction avec des rendements de récupération élevés (>80%).
- Résidus d’antibiotiques et de médicaments /
- Phénoliques
Application note - Guaïacol in red/white wine using AFFINIMIP®SPE Phenolics
Guaïacol dans le vin
Le nettoyage d’échantillons de vin rouge ou blanc dopés au Guaïacol a été effectué avec AFFINIMIP®SPE Phenolics.
L’équipe de Naturex a utilisé AFFINIMIP®SPE Phenolics pour la purification des saponines.
Tenon, M. et al. (2017) ‘Rapid, cost-effective and accurate quantification of Yucca schidigera Roezl. steroidal saponins using HPLC-ELSD method’, Food Chemistry, 221, pp. 1245–1252. Accès libre
R. Bousoumah et al. ont mis en œuvre une méthode multi-résidus pour la détermination des concentrations ultra-traces de 13 EDC œstrogéniques en utilisant AFFINIMIP®SPE Phenolics avant l’UHPLC-MS/MS après dérivatisation au chlorure de dansyl sur des échantillons d’urine, d’eau et de sérum.
13 analytes : estrone (E1), 17α-estradiol (α-E2), 17β-estradiol (β-E2), estriol (E3), 17α-éthinylestradiol (EE2), diéthylstilbestrol (DES), bisphénol A (BPA), bisphénol S (BPS), 4-n-octylphénol (OP), 4-n-nonylphénol (NP), coumestrol (COU), génistéine (GEN) et entérolactone (ENT).
Bousoumah, R., Antignac, J.P., Camel, V., Grimaldi, M., Balaguer, P., Courant, F., Bichon, E., Morvan, M.-L. and Le Bizec, B. (2015) ‘Development of a molecular recognition based approach for multi-residue extraction of estrogenic endocrine disruptors from biological fluids coupled to liquid chromatography-tandem mass spectrometry measurement‘. Analytical and Bioanalytical Chemistry, 407(30), pp.8713–8723
Roszko, M., Szymczyk, K., Rzepkowska, M. and Jedrzejczak, R. (2015), ‘Preliminary study on brominated dioxins/furans and hydroxylated/methoxylated PBDEs in Baltic cod (Gadus morhua) liver. Comparison to the levels of analogue chlorinated co-occurring pollutant’ Marine Pollution Bulletin, 96(1–2), pp.165–175
Roszko, M., Szymczyk, K. and Jędrzejczak, R. (2015) ‘Simultaneous separation of chlorinated/brominated dioxins, polychlorinated biphenyls, polybrominated diphenylethers and their methoxylated derivatives from hydroxylated analogues on molecularly imprinted polymers prior to gas/liquid chromatography and mass spectrometry‘ Talanta, 144, pp.171–183
Baltrons, O., Lopez-Mesas, M., Palet, C., Lederf, F. and Portet-Koltalo, F. (2013), ‘Molecularly imprinted polymers-liquid chromatography/fluorescence for the selective clean-up of hydroxylated polycyclic aromatic hydrocarbons in soils‘ Analytical Methods, 5(24), pp.6297–6305.